Utworzono: 24 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Diagnostyki Włośni

Zleceniodawca / właściciel ma świadomość, że sposób pobrania próbki oraz warunki jego dostarczenia do TPDW mają wpływ na wynik badania; bierze za te czynności odpowiedzialność. Za prawidłowe pobranie próbek do badań z zachowaniem możliwości identyfikacji zwierzęcia, od którego pochodzą odpowiadają osoby pobierające próbki. Są oni również odpowiedzialni za prawidłowe opakowanie, opisanie, oznakowanie, zabezpieczenie na czas transportu oraz dostarczenie próbek do TPDW. Próbki powinny być oznakowane w taki sam sposób jak tusze, z których pochodzą.

Próbki z rzeźni dostarczane powinny być do TPDW w zamkniętych tacach uniemożliwiających wysypanie i pomieszanie się próbek. Próbki mięsa pochodzące od świń i dzików przeznaczonych na użytek własny powinny być dostarczane w nieuszkodzonych, szczelnych woreczkach lub pojemnikach, aby zapobiec ewentualnym wyciekom oraz wtórnym zanieczyszczeniom. Próbki z poszczególnych tusz powinny być zapakowane oddzielnie i dokładnie opisane. Próbki powinny być zabezpieczone w taki sposób, aby niemożliwe było otwarcie opakowania bez naruszenia jego zabezpieczenia.

Próbki do badań powinny mieć wielkość umożliwiającą wykonanie badania zgodnie z obowiązującą metodyką, wraz z dochodzeniem do pojedynczej zakażonej tuszy.

Próbki mięsa do badań powinny być świeże, nie wykazywać cech zepsucia, wolne od powięzi i tłuszczu oraz innych elementów, które nie ulegają wytrawieniu, oraz w których istnieje małe prawdopodobieństwo występowania larw włośni (np. fragmenty krezki, płuc, wątroby, tłuszczu, itp.)

Próbki od świń i dzików przeznaczonych na użytek własny powinny być dostarczone do TPDW:

1. niezwłocznie po dokonaniu uboju, nie później niż 24 godziny od terminu uboju zwierzęcia, z którego tuszy próbki zostały pobrane,
2. niezwłocznie po dokonaniu odstrzału, nie później niż 48 godzin od dokonania odstrzału.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Informacja dla klientów dostarczających próbki do Pracowni Chorób Ryb i Badań Mykologiczno-Parazytologicznych

W pracowni wykonuje się:

• kompleksowe badania ryb
• badania chemiczne wody ze stawu hodowlanego
• badania parazytologiczne i mykologiczne wydalin i wydzielin, tkanek wewnętrznych i krwi, wytworów skóry, wymazów i popłuczyn z jam ciała zwierząt.

Za prawidłowe pobranie próbki oraz warunki jej transportu odpowiada zleceniodawca / właściciel.

Badanie ryb

Pracownia wykonuje kompleksowe badanie ryb zarówno dla hodowli wielkotowarowych jak również dla hodowców indywidualnych i hodowców ryb akwariowych. Wykonuje się badania właścicielskie jak również urzędowe. Materiałem do badań są żywe ryby i uśmiercone.
Wykonywane badania ryb:

• sekcja
• badania parazytologiczne – oznaczenie pasożytów wewnętrznych i zewnętrznych
• badania bakteriologiczne wraz z oznaczeniem wrażliwości bakterii na chemioterapeutyki
• badania wirusologiczne w kierunku IHN – zakaźna martwica układu krwiotwórczego, VHS – wirusowa posocznica krwotoczna ryb łososiowatych, IPN – zakaźna mrtwica trzustki ryb łososiowatych i SVC – wiosenna wiremia karpi (metoda ELISA i Real Time RT-PCR)
• badania Mykologiczne

Kryteria dotyczące wielkości pobranych próbek:

Hodowle wielkotowarowe

1. badania właścicielskie:
   ilość ryb w próbce zależy od wielkości i asortymentu wiekowego:
   

   wylęg z woreczkiem żółtkowym	minimum 50 szt
   wylęg żerujący do 4 cm	minimum 20 szt
   ryby od 4 – 6 cm	minimum 20 szt.
   ryby powyżej 6 cm	minimum 10 szt
   tarlaki	minimum 3 szt.

   Dopuszcza się w wyjątkowych sytuacjach przyjęcie mniejszej ilości ryb, takiej, która pozwoli na
   przygotowanie próbki pulowanej wystarczającej do wykonania badania wirusologicznego.
2. badania urzędowe:
   • od 30 do 150 szt. ryb – badanie monitoringowe
   • 10 szt. ryb – podejrzenie choroby

Hodowcy indywidualni i hodowcy ryb akwariowych - dopuszcza się taką ilość ryb w próbce, która pozwala na przygotowanie próbki pulowanej z wycinków wewnętrznych lub całych ryb o objętości 1cm³ mając na uwadze wielkość i asortyment wiekowy ryb.

Kryteria dotyczące transportu próbek ryb:

1. Ryby żywe – po odłowieniu ze zbiornika wodnego natychmiast umieszcza się w worku foliowym napełnionym w ½ części wodą i w ½ części tlenem, lub w zbiorniku, pojemniku, kontenerze z wodą zapewniającym bezpieczeństwo i odpowiednią przestrzeń. Optymalna temperatura wody przy pobieraniu próbek ryb: VHS 14oC, IHN 14oC, SVC 18oC, IPN 14oC
   • czas transportu ryb żywych do 6 godz.
2. Ryby uśmiercone – bezpośrednio po odłowieniu uśmierca się i umieszcza w odpowiednim izolowanym pojemniku (termo torba lub pojemnik styropianowy) z lodem lub z wkładami chłodzącymi.
   • czas transportu ryb uśmierconych do 12 godz.
   • temperatura transportu nie powinna przekraczać 10oC
3. Każda próbka powinna być oddzielnie zapakowana i trwale oznakowana zgodnie z pismem przewodnim w celu ich właściwej identyfikacji.

Uwaga: Ryby nie mogą być zamrożone. Do badań wirusologicznych nie nadają się ryby, które usnęły w stawie oraz z objawami rozkładu gnilnego.
Zabrania się dostarczania próbek ryb w opakowaniach papierowych i w warunkach niehumanitarnych.

Badanie chemiczne wody

Wykonywane oznaczenia znaczenia wybranych parametrów fizyko-chemicznych środowiska wodnego:

1. żelazo Fe^2+,3+
2. tlen O₂
3. pH
4. miedź Cu²⁺
5. wapń Ca²⁺
6. amoniak NH₄^+-
7. chlor Cl₂
8. fosforany PO₄^3-
9. azotany NO₃^-
10. azotyny NO₂
11. siarkowodór H₂S
12. twardość ogólna
13. twardość węglanowa
14. zasadowość w pH
15. dwutlenek wegla CO₂

Kryteria dotyczące wielkości pobranych próbek:

Do wykonania powyższych oznaczeń niezbędne jest minimum 500 ml wody. Wodę należy dostarczyć w szklanym lub plastikowym słoju lub butelce całkowicie wypełnionym wodą (naczynie wypełnione wodą do menisku wypukłego) i szczelnie zamkniętym.

Kryteria dotyczące transportu próbek:

Czas transportu maksymalnie 24 godz. od chwili pobrania. Jeżeli możliwości techniczne nie pozwolą to przechowywać w temperaturze chłodziarki 2-4 °C
Każda próbka powinna być oddzielnie zapakowana i trwale oznakowana zgodnie z pismem przewodnim w celu ich właściwej identyfikacji.

Badania parazytologiczne i mykologiczne

Badania parazytologiczne wykonuje się w celu stwierdzenia obecności pasożytów wewnętrznych i zewnętrznych w badanym materiale i określenia ich przynależności gatunkowej lub rodzajowej.

Badania mykologiczne wykonuje się w celu stwierdzenia obecności grzybów chorobotwórczych w badanym materiale i określenia ich przynależności gatunkowej lub rodzajowej oraz oznaczenia wrażliwości na chemioterapeutyk wyrażony strefą zahamowania wzrostu.

Kryteria dotyczące wielkości pobranych próbek parazytologicznych:

1. Próbka kału do badań koproskopowych w kierunku pasożytów wewnętrznych, metodą flotacji i dekantacji
   - wielkość pobranej próbki od 3 - 10gramów:
   1. dla kału końskiego, bydlęcego i świńskiego - wielkość małego jaja kurzego,
   2. dla kału owczego - wielkość orzecha włoskiego i zawierać 5-6 grudek,
   3. dla kału zwierząt futerkowych i innych - wielkość orzecha włoskiego.
2. Próbka moczu od zwierzęcia podejrzewanego o pasożyty układu moczowego, o objętości około 15 ml.
3. Próbka śluzu, wymaz z tchawicy i nosa w kierunku pasożytów płuc i górnych dróg oddechowych, zawiesić w roztworze fizjologicznym w probówkach.
4. Próbka krwi w probówkach ok. 1 ml z dodatkiem antykoagulantu lub 4-5 prawidłowo wykonanych rozmazów krwi od jednego zwierzęcia.
5. Próbka materiału do pośmiertnego badania zwierząt na obecność pasożytów:
   1. małe zwierzęta - dostarczyć do sekcji parazytologicznej w stanie nienaruszonym;
   2. od dużych i średnich zwierząt - wycinki 10x10 cm mięśni i narządów wewn. chorobowo zmienionych.
6. Próbka dojrzałych pasożytów lub ich postacie larwalne do badań taksonomicznych w postaci świeżej lub w postaci utrwalonej w płynach konserwujących.
7. Próbka zeskrobin skórnych, fragmentów skóry i jej wytworów w kierunku pasożytów zewnętrznych powinna pokrywać ok. 2 cm² powierzchni dna pojemnika.
8. Próbka czerwiu trutowego lub pszczelego, plastry posiadające minimum 100 zasklepionych komórek.
9. Próbka 200 – 300 pszczół z ula pobrana z ostatnich trzech plastrów z czerwiem niezasklepionym.
10. Próbka całego osypu pszczelego pobrana z dna ula (dennicy).

Kryteria dotyczące wielkości pobranych próbek mykologicznych:

1. Próbka zeskrobin skórnych i wymazy ze skóry i jej wytworów pobrane z miejsc chorobowo zmienionych na pograniczu skóry chorej i zdrowej (materiał powinien pokrywać ok. 2 cm² powierzchni dna pojemnika).
2. Próbka mleka - wydzieliny gruczołu mlekowego pobrane do jałowych pojemników w ilości ok. 10 ml.
3. Próbka - wymaz i wycinki z narządów w kierunku grzybic narządowych.
   1. małe zwierzęta przesyła się w całości.
   2. od zwierząt średnich i dużych pobiera się wycinki zmienionych narządów.
4. Próbka kilku przerośniętych grzybnią pszczół lub fragment zmienionego plastra.

Kryteria dotyczące transportu próbek do badań parazytologicznych i mykologicznych:

1. Próbki kału, zeskrobin skórnych, skóry i jej wytworów należy umieszczać osobno w opakowaniach jednorazowego użytku (pojemniki i torebki polietylenowe, słoje szklane). Próbki kału powinny zostać przesłane do laboratorium w dniu pobrania, możliwie jak najszybciej, aby nie dopuścić do rozwoju form pasożytniczych, w razie konieczności należy je przechowywać w lodówce w temp. 4 -8 °C.
2. Próbki moczu, śluzu, krwi pobrane do jałowych pojemników, dostarczyć do badania w ciągu 24 godzin.
3. Próbki wydzieliny gruczołu mlekowego pobrane do jałowych pojemników wysłać do pracowni tego samego dnia, temperatura transportu nie powinna przekraczać 10°C.
4. Próbki czerwiu i pszczół należy przechowywać i transportować w papierowym opakowaniu, niesprzyjającym rozwojowi pleśni, nalepiej w temperaturze poniżej 0°C.
5. Zwłoki zwierząt ze względu na możliwość zakażenia ludzi, muszą być właściwie opakowane - całe zwierzęta w workach foliowych, a narządy wewnętrzne w słoikach lub workach foliowych.

Informacje dotyczące wszystkich próbek

Dokumentacja dotycząca próbki:

Do każdej próbki powinno być dołączone pismo przewodnie (zlecenie na wykonanie badania jest dostępne w Punkcie Przyjęcia Próbek lub do pobrania z naszej strony internetowej) wskazujące między innymi:

• właściciela zwierzęcia
• zleceniodawcę, jeśli jest inny niż właściciel
• płatnika za badanie, jeśli jest inny niż właściciel
• adres, na który wysłać sprawozdanie z badań
• kierunki (choroby), w jakich ma być wykonane badanie
• identyfikacja zwierzęcia, rodziny pszczelej, od których pobrano próbkę
• datę pobrania próbki
• inne informacje podane na zlecenie

Sprawozdania z badań

Czas wykonania badania w zależności od zleconego rodzaju i kierunku od 1 do 21 (badanie wirusologiczne ryb) dni
Sprawozdania z badań są wysyłane w jednym egzemplarzu zgodnie z dyspozycją zawartą w piśmie przewodnim / zleceniu. Każdy dodatkowy egzemplarz sprawozdania podlega opłacie zgodnie z cennikiem.
Wysyłka sprawozdania z badań e-mailem, faksem możliwa jest wyłącznie po wcześniejszym opłaceniu badań.

W przypadku wszelkich pytań prosimy o kontakt z Pracownią Chorób Ryb i Badań MykologicznoParazytologicznych ZHW w Bydgoszczy
tel. 52/339-82-16
e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Diagnostyki Chorób Zakaźnych

Postępowanie w Punkcie Przyjęć Próbek (PPP)

1. Sprawdzić stan opakowań: - opakowanie nie może być uszkodzone, powinno być odporne na uszkodzenia mechaniczne, szczelnie zamknięte, oznakowane.
   1. Próbki do badań w kierunku ASFV powinny być umieszczone w pojemnikach wyraźnie oznakowanych w celu odpowiedniej identyfikacji zwierząt, od których zostały pozyskane próbki. Próbki do badań dostarczane są w sterylnych pojemnikach podstawowych najlepiej plastikowych zamykanych szczelnie nakrętką oraz sterylnych probówkach bez antykoagulantu, jeśli chcemy uzyskać surowicę do badań serologicznych; lub z EDTA/heparyną, jeśli chcemy uzyskać pełną krew do badań molekularnych.
   2. Próbki do badań w kierunku wirusa grypy ptaków typu A powinny być umieszczone w sterylnych pojemnikach podstawowych najlepiej plastikowych zamykanych szczelnie nakrętką.
      • Wszystkie szczelnie zamknięte pojemniki podstawowe zawierające próbki do badań powinny być umieszczone w drugim szczelnie zamkniętym i zaklejonym, wodoodpornym, plastikowym lub metalowym kontenerze odpornym na uszkodzenia mechaniczne.
      • Wewnątrz kontenera powinien znajdować się materiał absorbujący w celu pochłaniania ewentualnych przecieków z pojemników lub probówek oraz wkłady chłodzące, w ilości wystarczającej do utrzymania wymaganej temperatury przez cały czas trwania transportu do laboratorium jeśli jest on dłuższy niż 12 godzin od momentu pobrania, w innym przypadku, próbki powinny być przesyłane w temperaturze 4-8°C w kontenerach z wkładami chłodzącymi. Dopuszcza się ewentualne zamrażanie narządów wewnętrznych w przypadku przewidywanego transportu powyżej 48 godzin.
      • Próbki powinny być oznaczone czytelnymi, indywidualnymi kodami, aby można było zidentyfikować od którego zwierzęcia, gospodarstwa lub obiektu pochodzą.
2. Wszystkie próbki w Punkcie Przyjęć Próbek przyjmowane są warunkowo, gdyż ostateczna ocena ich przydatności do badań następuje w Pracowni.

Próbki.

1. Próbki od świń i dzików
   Próbki krwi powinny być w probówkach do tego przeznaczonych, ustawione w pozycji pionowej w kartonach lub stelażach styropianowych.
   Opakowanie zewnętrzne powinno posiadać szczegółowe informacje dotyczące pobranych próbek. Sprawdzić czy ilość próbek jest zgodna z dokumentacją towarzyszącą.
   
   1. Krew do badań molekularnych.
      • objętość krwi w probówce od 2-3 ml z dodatkiem antykoagulantu, bez oznak zanieczyszczenia florą bakteryjną i grzybiczą.
   2. Krew do badań serologicznych
      • objętość krwi w probówce ok. 5 ml bez dodatku antykoagulantu, bez oznak zanieczyszczenia florą bakteryjną i grzybiczą.
   3. Kości, wycinki tkanek i narządów wewnętrznych
      • każda próbka pobranych narządów (ok. 2-3 cm² tkanki) jak: śledziona, migdałki, nerki, węzły chłonne, tkanka płucna powinna być zapakowana oddzielnie do zamkniętych, sterylnych, wodoodpornych i odpornych na uszkodzenia mechaniczne pojemników podstawowych oraz szczelnych woreczków plastikowych i czytelnie oznakowana. Sprawdzić czy ilość próbek jest zgodna z dokumentacją towarzyszącą.
      • każda kość powinna być zapakowana oddzielnie do zamkniętych pojemników plastikowych lub woreczków plastikowych i czytelnie oznakowana. Sprawdzić czy ilość próbek jest zgodna z dokumentacją towarzyszącą.
        
        
2. Wymazy od ptaków z tchawicy/jamy ustno-gardłowej i kloaki powinny być umieszczone w specjalnym środku do transportu wirusów. W przypadku braku takiego podłoża wymazy mogą być umieszczone w pojemnikach i dostarczone do laboratorium w postaci suchej. Próbki narządów wewnętrznych i jelit powinny być umieszczone w osobnych pojemnikach. 
   
   1. Wymazy od ptaków z tchawicy/jamy ustno-gardłowej i kloaki
      • każdy pobrany wymaz powinien być zapakowany oddzielnie do zamkniętych pojemników plastikowych lub woreczków plastikowych i czytelnie oznakowany.
        Sprawdzić czy ilość próbek jest zgodna z dokumentacją towarzyszącą.
   2. Narządy wewnętrzne i jelita wraz z treścią lub kał pobrane od ptaków
      • próbki pobranych narządów jak: mózg, wątroba, śledziona, nerki, płuca, tchawica, powinny być zapakowane do zamkniętych, sterylnych, wodoodpornych i odpornych na uszkodzenia mechaniczne pojemników podstawowych oraz szczelnych woreczków plastikowych i czytelnie oznakowana,
      • próbki pobranych jelit wraz z treścią lub kał powinny być zapakowane oddzielnie do zanikniętych, sterylnych, wodoodpornych i odpornych na uszkodzenia mechaniczne pojemników podstawowych oraz szczelnych woreczków plastikowych i czytelnie oznakowana.
        
        

Należy sprawdzić czy ilość próbek jest zgodna z dokumentacją towarzyszącą.

Postępowanie w pracowni

1. Sprawdzić czy:
   • w przypadku krwi wysokość słupka krwi w probówce wynosi minimum 1/2 wysokości probówki o pojemności 10 ml, do badań molekularnych w objętości minimum 2-3 ml z dodatkiem antykoagulantu, bez oznak zanieczyszczenia florą bakteryjną i grzybiczą.
   • w przypadku narządów wewnętrznych i jelit nie ma zaawansowanego rozkładu gnilnego.
   • w przypadku wymazów nie ma uszkodzeń i próbka jest w stanie nienaruszonym.
2. Jeżeli wymienione kryteria są spełnione próbki należy ocenić jako prawidłowe i podjąć decyzję o rozpoczęciu badania.
3. Jeżeli stan próbek jest nieprawidłowy nie podlegają one przyjęciu, co zostaje odnotowane w rejestrze próbek nie przyjętych do badań.
4. W przypadku wątpliwości przy ocenie próbek powiadomić KP, który podejmie decyzję o postępowaniu z próbkami.
5. Ocena próbek w pracowni jako prawidłowych oznacza zdjęcie warunku nadanego przy przyjęciu próbek w Punkcie Przyjęć Próbek.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do badań w Pracowni Badania Środków Spożywczych

Informacje ogólne

1. Do badań przyjmowane są próbki żywności oraz próbki środowiskowe z obszaru produkcji żywności (wymazy i wycinki z tusz, a także wymazy z powierzchni przy produkcji żywności).
2. Próbki do badań należy dostarczyć w szczelnym, nieuszkodzonym opakowaniu, zabezpieczone przed wtórnym zanieczyszczeniem, oznaczone w sposób umożliwiający ich identyfikację.
3. Próbki powinny posiadać cechy właściwe dla asortymentu, nie wykazujące cech zepsucia, zmian w wyglądzie zewnętrznym i/lub konsystencji i/lub zapachu dyskwalifikujących próbkę.
4. Próbki mogą być opakowane w papier, folię, woreczki foliowe, woreczki strunowe, pojemniki plastikowe, szklane, opakowania fabryczne (jednostkowe) lub inne czyste opakowania w zależności od asortymentu.
5. Próbki należy dostarczyć w czasie jak najkrótszym od ich pobrania, w zalecanych przez odpowiednie normy  
6. Opis próbki w chwili dostarczenia do badań powinien zawierać co najmniej: datę produkcji i/lub datę pobrania i/lub datę przydatności, datę i godzinę pobrania (w przypadku np.: mleka surowego, próbek wycinków i wymazów).
7. W przypadku próbek przechowalniczych opis powinien ponadto zawierać – termin rozpoczęcia badania i/lub długość okresu przechowywania w przypadku próbek przechowywanych w laboratorium, a także temperaturę, w której ma być przechowywana próbka. W odniesieniu do próbek przechowywanych u właściciela/zleceniodawcy informacja na temat warunków przechowywania (min.: temperatura przechowywania, czas przechowywania).

Informacje szczegółowe

1. Temperatura i czas dostarczenia próbek:
   • produkty nietrwałe w temperaturze pokojowej: od 1ºC do 8ºC,
   • produkty mrożone i głęboko mrożone: poniżej – 15ºC, najlepiej poniżej – 18ºC,
   • produkty trwałe, na przykład konserwy sterylizowane: temperatura pokojowa (poniżej 40ºC),
   • mleko surowe: od 1ºC do 5ºC, próbki powinny być dostarczone do laboratorium w możliwie najkrótszym czasie od pobrania, jednak nie dłuższym niż 5 godzin,
   • próbki wymazów i wycinków z tusz zwierząt rzeźnych: od 1ºC do 8ºC; próbki powinny być dostarczone do laboratorium w możliwie najkrótszym czasie, jednak nie później niż w ciągu 22 godzin od pobrania
   • próbki wymazów z powierzchni środowiska produkcyjnego: od 1ºC do 8ºC, próbki dostarczyć w możliwie najkrótszym czasie, jednak nie później niż w ciągu 22 godzin od pobrania,
   • skórki z szyi tusz brojlerów - od 1ºC do 8ºC, próbki dostarczyć w możliwie najkrótszym czasie, jednak nie później niż w ciągu 22 godzin od pobrania, w przypadku pobierania skórek z szyi tylko w kierunku Campylobacter spp., próbki dostarczyć w możliwie najkrótszym czasie, jednak nie później niż w ciągu 46 godzin od pobrania
   • próbki do badań pozostałości substancji przeciwbakteryjnych w ramach realizacji Krajowego Planu Kontroli : temperatura od 1ºC do 8ºC dla produktów nietrwałych w temperaturze pokojowej, dopuszcza się również mrożenie próbek <0°C / ≤-18°C (z wyłączeniem próbek jaj). Podczas przyjmowania próbek do badań, próbki dostarczone w stanie uniemożliwiającym ocenę ich przydatności (np. zamrożone) będą przyjmowane z zastrzeżeniem, że gdy wynik oceny będzie negatywny, może mieć miejsce odstąpienie od badań.
     Próbki dostarczyć niezwłocznie, jednak nie później niż 7 dni od dnia pobrania z zachowaniem warunków transportu.
2. Wielkość próbki dostarczanej do badań:
   
   

   Lp.	Rodzaj próbki	Wielkość próbki badanej
   1.	Żywność: mięso i produkty mięsne ryby i produkty rybne (w tym owoce morza), żywność mrożona, wyroby garmażeryjne, wyroby ciastkarskie, przetwory owocowe, przetwory warzywne, wyroby cukiernicze, przyprawy	Nie mniej niż 200 g
   2.	Skórki z szyjek tusz drobiowych	1 próbkę zbiorczą stanowią – skóry szyjek z 3 tuszek drobiowych o łącznej masie min. 25 g 5 x 26 g (do równoczesnego badania w kierunku Salmonella  i Campylobacter) 5 x 10 g (badanie w kierunku Campylobacter)
   3.	Mleko i produkty mleczne	Nie mniej niż 200 g/ml, w przyp. Opakowań mniejszych za próbkę przyjmuje się kolejne opakowania o łącznej masie nie mniejszej niż 200 g/ml
   4.	Mleko surowe	Minimum 100 ml. W przypadku próbek mleka surowego zaleca się, aby pojemnik na próbkę był napełniony nie więcej niż w ¾ pojemności w celu uniknięcia wycieku próbki, a także by umożliwiał poprawne wymieszanie próbki  i wykonanie badania.
   5.	Próbki z powierzchni produkcyjnej (wymazy)	Pobrane z określonej powierzchni
   6.	Próbki z tusz zwierząt rzeźnych (wycinki, wymazy)	Pobrane z określonej powierzchni - metoda niszcząca: 4 wycinki o łącznej powierzchni 20 cm2 , - metoda nieniszcząca: co najmniej 100 cm2 na każde miejsce pobrania (dla tusz małych przeżuwaczy – 50 cm2), - badanie w kierunku Salmonella: łączna powierzchnia wymazu musi obejmować co najmniej 400 cm2. Na rynek amerykański - 300 cm2

   
   

   Rodzaj i wielkość pobieranych próbek do badania substancji niedozwolonych objętych Krajowym Planem Kontroli
   Mięśnie	500 g - bydło, świnie, owce, kozy, konie, drób, króliki. 300 g - zwierzęta łowne, zwierzęta dzikie utrzymywane przez człowieka,
   Wątroba	200 g - ryby 300 g - bydło, świnie, owce, kozy, koniowate, drób, ryby zwierzęta dzikie utrzymywane przez człowieka
   Nerki	200 g, - bydło, świnie, owce, kozy, koniowate, drób, zwierzęta dzikie utrzymywane przez człowieka, króliki
   Jaja	Jaja kurze - 12 szt. Jaja przepiórcze – 24 szt.
   Ryby	1 ryba (1 kg) – jeśli waga ryby jest mniejsza należy pobrać więcej ryb z tej samej partii, aby wielkość próbki wyniosła 1 kg
   Mleko	1000 ml - bydło, 500 ml - kozy, owce

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Pracownia Przygotowania Pożywek i Szkła Laboratoryjnego

Kierownik Pracowni: mgr inż. Kamilla Piątkiewicz

Asystent: mgr inż. Justyna Smolińska

56 655 30 26 wew. 538 / 540

e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

• przygotowanie pożywek, odczynników oraz płynów dla wszystkich Pracowni ZHW OT Toruń;
• przygotowanie i sterylizacja szkła oraz drobnego sprzętu laboratoryjnego dla Pracowni ZHW zlokalizowanych w Toruniu;
• sterylizacja pozostałości po badaniach.

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do pracowni PCR

• Do badań w kierunku KHV przyjmowane są ryby z gatunku karp i koi karp.

• Do badań w kierunku Salmonella przyjmowane są próbki żywności oraz próbki środowiskowe z obszaru produkcji żywności (w tym wymazy z tusz, skórki z szyi tuszek drobiowych).

• Do badań w kierunku Listeria monocytogenes przyjmowane są próbki żywności oraz próbki środowiskowe z obszaru produkcji żywności.

• Próbki do badań należy dostarczyć w szczelnym, nieuszkodzonym opakowaniu, zabezpieczone przed wtórnym zanieczyszczeniem, oznaczone w sposób umożliwiający ich identyfikację.

• Próbki mogą być opakowane w papier, folię, woreczki foliowe, woreczki strunowe, pojemniki plastikowe, szklane, opakowania fabryczne (jednostkowe) lub inne czyste opakowania w zależności od asortymentu.

• W dokumentacji towarzyszącej próbce powinna być podana data oraz godzina pobrania próbek (w przypadku próbek pobranych dzień przed dostarczeniem do laboratorium) oraz powierzchnia, z której została pobrana próbka.

• Liczba i wielkość próbek musi być zgodna z deklaracją klienta na zleceniu, stanem faktycznym próbek oraz jeśli to konieczne z odpowiednią normą przedmiotową lub właściwym aktem prawnym.

Temperatura transportu

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek w pracowni T/CHZ

Wersja PDF(do wydrukowania) 

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Wirusologicznej

Badanie w kierunku wścieklizny

Materiał do badania:

• całe zwłoki, w przypadku małych zwierząt,
• głowa, w przypadku dużych zwierząt.

W przypadku dodatkowych badań w kierunku BSE dotyczących bydła – głowa zwierzęcia
z kolczykiem identyfikacyjnym.

Transport:

• materiał w miarę możliwości świeży, dostarczony bezpośrednio do laboratorium po jego pobraniu,
• materiał szczelnie zapakowany, zabezpieczony pod względem epizootycznym i oznakowany,
• schładzanie materiału zaleca się jedynie w sytuacji transportu w wysokiej temperaturze i/lub na duże odległości,
• zamrażanie materiału dopuszcza się jedynie w przypadku niemożności dostarczenia materiału bezpośrednio po pobraniu.

Do próby należy dołączyć pismo przewodnie

Badanie monitoringowe wścieklizny:

Materiał do badania od lisów wolno żyjących:

• surowice/płyny z jam ciała – klarowne, dopuszcza się hemolizę nieznacznego stopnia,
• próbki kości – prawa lub lewa gałąź żuchwy od spojenia żuchwowego do stawu lub kość ramienna lub piszczelowa.

Transport:

• materiał szczelnie zapakowany, zabezpieczony pod względem epizootycznym i oznakowany,
• materiał transportowany w miarę możliwości w warunkach chłodni.

Do próby należy dołączyć listę zawierającą zestawienie próbek surowic/płynów z jam ciała i próbek kości (np. nr próbki, data odstrzału lisa, wiek/płeć, powiat, gmina, miejscowość).

Badanie w kierunku choroby mętwikowej bydła

Materiał do badania:

• wypłuczyny z worka napletkowego buhaja lub popłuczyny z pochwy samicy.

Transport:

• buteleczki szklane, szczelnie zamknięte, z podłożem transportowym, na które pobrano próbkę (podłoże transportowe wcześniej odebrane z Pracowni Pożywek ZHW w Bydgoszczy). Próbki należy dostarczyć w jak najkrótszym czasie od pobrania, wskazany kontakt z pracownią (tel. 52 339 82 19) w celu ustalenia terminu dostarczenia/badania.

Do próby należy dołączyć listę zawierającą numery ewentualnie nazwy badanych zwierząt.

Badanie koncentracji, morfologii, spermiogram

Materiał do badania:

• nasienie od wszystkich gatunków zwierząt

Transport:

• szczelnie zamknięte probówki z nasieniem opisane z numerem z listy badanych zwierząt. Próbki należy dostarczyć w jak najkrótszym czasie od pobrania.

Do próby należy dołączyć listę badanych zwierząt zawierającą numery np. kolczyka.

Badania anatomopatologiczne (sekcyjne):

Materiał do badań:

• zwłoki wszystkich gatunków zwierząt (przyjmowane 7 dni w tygodniu, 24 godziny na dobę).

Transport:

• Materiał dostarczony możliwie w jak w najkrótszym czasie po śmierci zwierzęcia,
• materiał szczelnie zapakowany, zabezpieczony pod względem epizootycznym i oznakowany,
• dopuszcza się w szczególnych przypadkach zamrożenie materiału.

Do próby należy dołączyć informacje dotyczące objawów choroby i okoliczności śmierci zwierzęcia. Wskazany kontakt z pracownią (tel. 52 339 82 19) w celu uzupełnienia wywiadu.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Informacje dla klientów dostarczających próbki do Pracowni Serologicznej

Zleceniodawca / właściciel odpowiada za prawidłowe pobranie próbki oraz warunki jej dostarczenia. Próbka niespełniająca poniższych wymagań może nie być przyjęta do badań.

1. Informacje ogólne
   1. Materiałem do badań serologicznych wykonywanych w naszej pracowni jest surowica krwi. W każdym przypadku próbki krwi powinny być pobierane jałowo, a używany sprzęt powinien być sterylny.
      Krew do tych badań pobiera się „na skrzep" (tzn. probówka bez antykoagulantów, można używać probówek do separacji surowicy z granulatem i wykrzepiaczem). Po pobraniu krwi przez lekarza weterynarii probówki należy odstawić na kilka godzin (minimum 2-3) w temperaturze pokojowej (+18 do +25°C) w celu uformowania się skrzepu.
      W razie trudności w dostarczeniu próbek krwi do laboratorium w dniu ich pobrania, można po uformowaniu się skrzepu i wydzieleniu surowicy w temperaturze pokojowej, przechować je do dnia następnego w temperaturze lodówki 2-8°C. Niedopuszczalne jest zamrażanie pobranej krwi.
   2. W czasie transportu do laboratorium próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerośnięcie próbek. Surowice otrzymane z próbek krwi silnie zhemolizowanych lub zanieczyszczonych florą bakteryjną nie nadają się do badań. Próbki o mętnym zabarwieniu surowicy spowodowanym wzrostem zawartości lipoprotein również nie nadają się do badań.
      Jeżeli możliwości techniczne na to pozwalają, do badań można dostarczyć surowicę krwi, w jałowych probówkach ze szczelnym korkiem lub probówkach typu eppendorf.
      Probówki z igłami (tubostrzykawki) nie nadają się do przesyłania krwi pocztą ze względu na prawdopodobieństwo wycieku !!!
   3. Próbki należy oznakować zgodnie z pismem przewodnim, w celu ich właściwej identyfikacji, starannie zapakować (zabezpieczenie przed wyciekiem) i przekazać do laboratorium w możliwie najkrótszym czasie. W przypadku wysyłki próbki pocztą I kurierem prosimy o upewnienie się, że próbka dotrze do laboratorium najpóźniej następnego dnia roboczego.
      
      
2. Dokumentacja dołączona do próbek
   Przekazywanym próbkom powinno towarzyszyć pismo przewodnie (zlecenie na wykonanie badań — do pobrania z naszej strony internetowej) wskazujące m.in.:
   
   • właściciela zwierząt wraz z kontaktowym numerem telefonu,
   • zleceniodawcę (jeśli jest inny niż właściciel),
   • płatnika za badania (jeśli jest inny niż właściciel),
   • adres wysyłki sprawozdania z badań,
   • kierunki (choroby) w jakich ma być wykonane badanie,
   • identyfikacja zwierząt, od których pobrano krew do badań (np. konie — dane podstawowe jak nr paszportu, nazwa, płeć, maść, wiek itp., bydło — nr kolczyka, płeć itp.)
   • data pobrania próbki,
   • oraz inne informacje podane w zleceniu.
   Klienci dostarczający próbki pocztą/kurierem: w polu „uwagi" prosimy wpisać sposób zapłaty za badanie (przelewem na konto lub płatność za pobraniem)
   
   
3. Badania
   1. Badania koni — nosacizna, zaraza stadnicza koni, niedokrwistość zakaźna koni (NZK) — w trzech kierunkach badania wystarczy jedna probówka krwi 7-10 ml lub ok. 2 ml surowicy. 
      Badania okresowe ogierów, wyrabianie paszportów dla koni — celem badania jest wykorzystanie wyniku w obszarze regulowanym prawnie.
   2. Inne badania— bruceloza, enzootyczna białaczka bydła (EBB), zakaźne zapalenia nosa i tchawicy oraz otręt bydła (IBR/IPV), wirusowa biegunka bydła i choroba błon śluzowych (BVD-MD) - wystarczy jedna probówka krwi 7-10 ml lub minimum 2 ml surowicy. 
      Szczegółowych informacji co do wyboru rodzajów badań, zastosowanych testów w zależności od celów badania i potrzeb udzieli lekarz weterynarii opiekujący się zwierzętami i pobierający próbki, który może zlecić odpowiednie badania.
4. Sprawozdania z badań
   Sprawozdania z badań wysyłane są w jednym egzemplarzu, zazwyczaj do płatnika będącego równocześnie zleceniodawcą i właścicielem lub zgodnie z dyspozycją zawartą w piśmie przewodnim / zleceniu (np. zleceniodawca i właściciel to różne osoby). Dodatkowe egzemplarze sprawozdań mogą być wystawione i wysłane zgodnie z Państwa wyraźną dyspozycją tylko w przypadku wcześniejszego opłacenia badania i dodatkowych egzemplarzy. Każdy dodatkowy egzemplarz sprawozdania podlega opłacie zgodnie z cennikiem.
   Wysyłka sprawozdań z badań e-mailem, faksem możliwa jest wyłącznie po wcześniejszym opłaceniu badań lub dla klientów, którzy zawarli umowę na wykonywanie badań w ZHW w Bydgoszczy.

W razie wszelkich pytań prosimy o kontakt z Pracownią Serologiczną ZHW w Bydgoszczy tel. 52/339-82-06, 52/339-82-07, e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do badania w kierunku wykrywania obecności materiału genetycznego Borrelia burgdorferii, Anaplasma, Ehrlichia, TBEV (kleszczowe zapalenie mózgu), Babesia

Do badania przyjmowany jest kleszcz lub krew.

Sposób dostarczenia próbki kleszcza:

Kleszcz powinien być w całości, nie musi być żywy: (nadmierna fragmentacja tzn. dostarczenie samych odnóży lub wyłącznie części odwłoka ma wpływ na wynik końcowy badania i nie wykrycie materiału genetycznego bakterii).

• kleszcza najlepiej umieścić w zwilżonym płatku kosmetycznym/chusteczce następnie włożyć do czystego pojemnika szklanego/ pojemnika plastikowego/woreczka foliowego /pudełka i szczelnie zamknąć;
• każdy kleszcz / próbka krwi powinien znajdować się w oddzielnym pojemniku, podpisanym datą pobrania próby, imieniem i nazwiskiem zleceniodawcy,
• materiał najlepiej dostarczyć w możliwie najszybszym czasie od momentu pobrania;
• materiał do badania można dostarczyć osobiście, wysłać kurierem lub pocztą.
• do czasu przekazania kleszcza do badania pojemnik wraz z pasożytem najlepiej przechowywać w temperaturze lodówkowej +2°C do + 8°C lub w zamrożeniu -20°C jeżeli musimy przetrzymać kleszcza powyżej trzech dni.

Sposób dostarczenia próbki krwi:

• próbka krwi powinna być transportowana do laboratorium w jałowej, szczelnie zamkniętej probówce z EDTA 0,5 ml w temperaturze otoczenia, w czasie nie dłuższym niż 2 godziny od pobrania lub w ciągu 24 godzin przy przechowywaniu i transportowaniu próbki w temperaturze 5°C ( ± 3°C ).

 Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 23 maj 2023

Pracownia Przygotowania Pożywek I Szkła Laboratoryjnego / Dział Badań Molekularnych ZHW Bydgoszcz

Kierownik Pracowni: mgr Joanna Przybysz
tel.: 52 339 82 14
e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Asystent: mgr inż. Lucyna Głębocka
tel.: 52 339 82 15

Zadania pracowni:

• przygotowywanie pożywek, rozcieńczalników, buforów i innych odczynników do badań laboratoryjnych dla Pracowni ZHW w Bydgoszczy celem, stworzenia tym pracowniom warunków do uzyskiwania wiarygodnych, rzetelnych i użytecznych wyników badań;
• mikrobiologiczna kontrola jakości przygotowywanych pożywek, sprawdzenie cech jakościowych z użyciem odpowiednich szczepów testowych;
• mycie, sterylizacja, pakowanie szkła laboratoryjnego i sprzętu wielokrotnego użytku;
• utylizacja przez sterylizację w parze wodnej pozostałości po badaniach, sprzętu laboratoryjnego, materiału zakaźnego;
• badanie techniką real-time PCR:
  
  • wykrywanie materiału genetycznego bakterii z grupy Borrelia burgdorferii
  • wykrywanie obecności materiału genetycznego bakterii z rodzaju Anaplasma
  • wykrywanie obecności materiału genetycznego bakterii z rodzaju Ehrlichia
  • wykrywanie obecności materiału genetycznego wirusa TBEV (kleszczowe zapalenie mózgu)
  • wykrywanie obecności materiału genetycznego pierwotniaków z rodzaju Babesia (B.canis, B.gibsoni, B. divergens)

Wzór zlecenia

Kryteria przyjęcia próbek 

Utworzono: 22 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Mikrobiologicznego Badania Pasz

Do badań przyjmowane są próbki pasz i wody:

• oznakowane przez zlecającego zgodnie z jego zleceniem,
• ilość opakowań jednostkowych zgodna ze zleceniem,

Opakowanie próbek przyjmowanych do badań:

• próbki do badań należy dostarczyć w opakowaniu szczelnym, czystym, suchym, bezwonnym, zabezpieczającym przed zmianą właściwości,

Wielkość próbki przyjmowanej do badań:

• minimalna wielkość próbki do badań mikrobiologicznych - około 500 g lub 100 ml lub całe opakowanie jednostkowe, jednak nie mniejsze niż 100 g lub 100 ml,
• 200 ml – woda do pojenia zwierząt – badanie w kierunku wykrywania pozostałości substancji przeciwbakteryjnych 5-płytkową metodą dyfuzji,

Przechowywanie próbek do rozpoczęcia badań:

• próbki pasz ze składników o małej stabilności – w temperaturze 0-8°C,
• próbki pasz ze składników stabilnych – temperatura otoczenia w pomieszczeniach suchych i zaciemnionych,
• próbki wody do pojenia zwierząt – temperatura 0-8°C do 30h od pobrania lub w stanie zamrożenia - badanie w kierunku wykrywania pozostałości substancji przeciwbakteryjnych 5-płytkową metodą dyfuzji,

Dokumentacja towarzysząca próbce:

• próbkom powinno towarzyszyć zlecenie wypełnione przez zleceniodawcę.

Wersja PDF(do wydrukowania)

Utworzono: 19 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Bakteriologii Ogólnej

• Próbki do badań powinny być dostarczone w jałowych szczelnie zamkniętych opakowaniach i starannie oznakowane.
• Pobrane próbki należy dostarczyć do laboratorium niezwłocznie. Jeżeli próbek nie można wysłać do laboratorium w ciągu 24 godzin od pobrania, przechowuje się je w chłodziarce.
• Podczas transportu należy chronić próbki przed temperaturą przekraczającą 25°C oraz działaniem promieni słonecznych.
• Próbki nie mogą być dostarczone w stanie zamrożonym.
• Do próbek należy dołączyć prawidłowo wypełnione zlecenie i/lub dokumentację dodatkową.

Próbki do badań laboratoryjnych w kierunku Salmonella poza Krajowym Programem Zwalczania Salmonella:

1. Próbka kału:
   • z każdego obiektu/kurnika powinna być pobrana osobna próbka kału o masie minimum 60 g
2. Wymazy podeszwowe ze ściółki:
   • próbka zbiorcza (2 wymazy podeszwowe)
3. Wymazy powierzchniowe z zakładów wylęgu drobiu (ZWD) na czystość powierzchni:
   Zgodnie z : Instrukcja Nr 51 z 01.04.1980 r. (Nr WETz.X.4401-. 20/80). Min. Roln.-Dep. Wet. dot. bakteriologicznego badania czystości zakładów wylęgowych oraz
   Dz.U. 2013 poz. 1301, Dz.U. 2014 poz. 1332, z późn. zm. - Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 września 2013 r. w sprawie wprowadzenia szczegółowych wymagań weterynaryjnych mających zastosowanie do drobiu i jaj wylęgowych.
   
   • badanie w kierunku ogólnej liczby bakterii,
   • badanie w kierunku obecności Salmonella
4. Wymazy powierzchniowe pobierane z jednego obiektu/kurnika:
   • 4 wymazy powierzchniowe z podłoża
   • 4 wymazy powierzchniowe z kątów narożnych
   • 3 wymazy z urządzeń do karmienia
   • 2 wymazy z systemu wentylacyjnego
   • 2 wymazy z magazynu jaj
5. Wymazy z kloaki/wymazy z odbytu świni i bydła:
   
   • od każdej sztuki osobny wymaz pobrany do jałowej probówki
   • przypadku wymazów z kolaki z jednego stada można utworzyć próbkę zbiorczą składającą się maksymalnie z 30 wymazów
6. Próbki od piskląt jednodniowych (wstaw piskląt)
   
   • wyściółka wraz z mekonium z 10 pojemników transportowych z każdej dostawy (po 25 g z pojemnika) lub
   • wymazy powierzchniowe z dna 10 pojemników transportowych (w przypadku pojemników bez wyściółki) lub
   • pisklęta padłe (w tym również w czasie transportu) nie więcej niż 20 szt.
7. Zamarłe zarodki:
   
   • próbka zbiorcza stanowi maksymalnie 10 szt. jaj z zamarłymi zarodkami, nieuszkodzonymi, dostarczonymi na wytłaczankach, starannie opakowanych,
8. Jaja świeże:
   
   • 10 szt. jaj świeżych nieuszkodzonych, dostarczonych na wytłaczankach, starannie opakowanych

Próbki w kierunku pałeczek Salmonella Gallinarum (biowar Gallinarum i Pullorum)

1. W zakładzie utrzymującym drób należy pobrać następujące próbki:
   1. tkanki pobrane po śmierci zwierzęcia, w szczególności z wątroby, jelita, jajnika, jajowodu oraz połączenia krętniczo-kątniczego;
   2. próbki środowiskowe;
   3. wymazy z kloaki żywych ptaków, w szczególności tych, które wydają się być chore lub tych, które wskazano jako wysoce seropozytywne (liczba ptaków od których należy pobrać próbki/liczba próbek środowiskowych – 60)
2. W wylęgarni należy pobrać następujące próbki:
   1. pisklęta, które się nie wykluły (tj. zarodki zamarłe w skorupce);
   2. kurczęta drugiej kategorii (10 kurcząt drugiej kategorii i 10 kurcząt zamarłych w skorupce z każdego stada pochodzenia obecnego w inkubatorze w dniu pozyskiwania próbek albo 20 kurcząt drugiej kategorii z każdego stada pochodzenia obecnego w klujniku w dniu pozyskiwania próbek);
   3. smółka kurcząt (jedną próbkę zbiorcza puchu i smółki od piskląt z każdego inkubatora);
   4. puch lub pył z wylęgarni oraz ze ścian wylęgarni.

Próbki do badań bakteriologicznych

Padłe ptaki, ssaki, wycinki narządów wewnętrznych, zeskrobiny, wymazy (skóra, uszy, pochwa, nos itp.), kał, kałomocz gołębi, mocz, mleko i inne

Materiał do badań bakteriologicznych powinien być dostarczony do laboratorium:

• w jak najkrótszym czasie od pobrania, najlepiej w warunkach chłodniczych,
• w starannie oznakowanym, szczelnie zamkniętym jałowym opakowaniu (np. wymazówka, probówka, strzykawka, płytka Petriego, jałowy woreczek do próbek);

Materiał do badań bakteriologicznych powinien być pobrany w sposób uniemożliwiający zanieczyszczenie mikroflorą postronną.
Próbki powinny być pobrane od zwierząt nieleczonych lub po upływie karencji leku.
Do próbek należy dołączyć prawidłowo wypełnione zlecenie i/lub dodatkową dokumentację.

Nasienie(świeże lub mrożone)

Zgodnie z : Instrukcją nr 49 z 09.12.78 r. Min. Roln.-Dep. Wet. dot. mikrobiologicznego bad.
nasienia buhajów

1. Nasienie świeże
   • próbki w starannie oznakowanych, szczelnie zamkniętych jałowych opakowaniach, opisane i transportowane w warunkach chłodniczych, w jak najkrótszym czasie od pobrania;
2. Nasienie mrożone
   • próbki w starannie oznakowanych, szczelnie zamkniętych, jałowych opakowaniach, opisane i zdeponowane w kontenerze z ciekłym azotem;

BRUCELOZA

Zgodnie z: Instrukcją nr 46/2003 Gł. Lek. Wet. z dn. 25.08.2003r. Nr GIW z VII.420/lab-23/2003

Materiał do badań powinien być dobrze zapakowany w szczelnie zamknięte pojemniki, każda próbka powinna znajdować się w oddzielnym pojemniku. Pobrany materiał powinien być dostarczony w jak najkrótszym czasie (24 h ) w stanie schłodzenia 2-4 °C.
Jeśli natychmiastowe dostarczenie poronionego płodu nie jest możliwe, należy pobrać do jałowych pojemników wycinki następujących tkanek: wątroba, śledziona, płuca oraz zawartość żołądka płodu. Następnie pobrane próbki należy przechowywać w temperaturze poniżej - 20°C i w takim stanie dostarczyć do ZHW.

Próbki do badań w kierunku zgnilca amerykańskiego (Paenibacillus larvae)

Plastry lub ich wycinki

• próbka o powierzchni około 20 cm2 (zawierająca możliwie jak najwięcej komórek z chorym czerwiem – w miarę możliwości bez miodu)
• każda próbka powinna być oddzielnie zawinięta w papier i oznakowana
• następnie próbki należy umieścić w kartonowym pudełku zabezpieczającym próbki przed zgnieceniem
• do pakowania NIE NALEŻY używać materiałów utrudniających przepływ powietrza, które sprzyjają rozwojowi pleśni tj. torby plastikowe, folia aluminiowa, opakowania metalowe i szklane
• przechowywanie i transport – temperatura poniżej 0°C

Próbki miodu/ zapasów pokarmu

• próbka około 50g miodu (40 ml)
• miejscem rekomendowanym do pobrania próbek miodu z pnia pszczelego są plastry z czerwiem
• próbki należy pobrać jednorazowymi łyżeczkami lub szpatułkami do czystych, plastikowych pojemników, zamykanych szczelnym przykryciem
• przechowywanie i transport – temperatura pokojowa lub warunki chłodnicze

Próbki pszczół

• próbka około 100 pszczół
• pobiera się poprzez strząsanie lub zmiatanie owadów (najlepiej z plastrów z czerwiem)
• próbki powinny być zapakowane do papierowych kopert lub pojemników
• przechowywanie i transport – zamrożone lub umieszczone w 70% roztworze etanolu

Próbki do badań w kierunku zgnilca europejskiego (Melissococcus plutonius)

Plastry lub ich wycinki

• próbka o powierzchni około 20 cm2 (zawierająca możliwie jak najwięcej komórek z chorym czerwiem)
• każda próbka powinna być oddzielnie zawinięta w papier i oznakowana
• następnie próbki należy umieścić w kartonowym pudełku zabezpieczającym próbki przed zgnieceniem
• do pakowania NIE NALEŻY używać materiałów utrudniających przepływ powietrza, które sprzyjają rozwojowi pleśni tj. torby plastikowe, folia aluminiowa, opakowania metalowe i szklane
• przechowywanie i transport – temperatura poniżej 0°C

Wersja pdf(do wydrukowania)

Utworzono: 19 maj 2023

Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Chemicznego Badania Pasz

Do badań przyjmowane są próbki pasz:

• jednoznacznie oznakowane przez zleceniodawcę i zgodne z opisem zawartym w dołączonej dokumentacji,
• każda z dostarczonych próbek zawiera jednoznacznie podany kierunek(i) badań,
• zawiera informacje o rodzaju próbki i przeznaczeniu (pasza, dla jakiego gatunku zwierząt, premiks — jaki, ilu procentowy, pasza uzupełniająca itp),
• przy badaniach potwierdzających zawartość — podać deklarowaną lub oczekiwaną zawartość oznaczanego składnika,
• w przypadku oznaczania kokcydiostatyków określić rodzaj mieszanki: pasza docelowa, pasza nie docelowa, mieszanka czyszcząca,

Opakowanie próbek przyjmowanych do badań:

• powinny być: szczelne, czyste, suche, bezwonne, zabezpieczające próbkę przed zmianą właściwości,
• próbki do badań „w obszarze regulowanym prawnie” w kopertach „bezpiecznych”, lub zaplombowane i ostemplowane,

Wielkość próbki do badań:

• próbka do badań powinna mieć ok. 500 g lub 500 mi, lub stanowić cate opakowanie jednostkowe, jednak nie mniejsze niż 100 g. Przy wielu kierunkach oznaczeń i małej próbce należy skontaktować się z KP, lub osobą upoważnioną w celu ustalenia, czy otrzymana próbka wystarczy dla wykonania zleconych badań.

Przechowywanie próbek do rozpoczęcia badań:

• zgodnie z zaleceniami producenta paszy; z reguły pasze ze składników stabilnych — w pomieszczeniu suchym i zaciemnionym, w temperaturze pokojowej,
• pasze o małej stabilności w temp. 0 - 4 °C,

Dokumentacja towarzysząca próbce:

• zlecenie wypełnione przez zleceniodawcę,
• jeśli to istotne: pisma przewodnie, protokoły pobrania próbek,
• deklaracje producenta.

Dane wymagane do zapisania w sprawozdania z badań muszą być zapisane na komputerze lub na maszynie. Zapisy odręczne i niejednoznaczne nie będą przenoszone do sprawozdania z badań.

Wersja pdf (do wydrukowania)

Utworzono: 19 maj 2023